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dc.contributor.advisor | Sánchez Hernández Carla Vanessa | |
dc.contributor.advisor | Reveles Torres Luis Roberto | |
dc.contributor.author | Hernández Ayala Erica Gabriela | |
dc.contributor.editor | Centro universitario de Ciencias Biológicas y Agropecuarias | |
dc.contributor.editor | Universidad de Guadalajara | |
dc.contributor.other | Maestría en Ciencias en Biosistemática y Manejo de Recursos de Naturales y Agrícolas | |
dc.date.accessioned | 2020-07-23T06:06:07Z | |
dc.date.available | 2020-07-23T06:06:07Z | |
dc.date.issued | 2018 | |
dc.identifier.uri | http://repositorio.cucba.udg.mx:8080/xmlui/handle/123456789/6045 | |
dc.description | Tesis (Maestría en Ciencias en Biosistemática y Manejo de Recursos de Naturales y Agrícolas). Universidad de Guadalajara. CUCBA. | |
dc.description.abstract | El cultivo de chile para secado (Capsicum annuum L.) en el Norte Centro de México es susceptible a enfermedades ocasionadas por fitoplasmas, las cuales al presentarse generan pérdidas entre el 10 y 20% de la producción. En el presente trabajo se determinó la densidad poblacional de cicadélidos y de plantas hospederas alternas que influyen sobre la incidencia de fitoplasmas en el cultivo. Mediante la técnica de línea de Canfield modificada (punto de pie), se determinó la frecuencia de especies vegetales y presencia de síntomas asociados a este patógeno. La captura de vectores fue mediante la técnica de golpe de red. Se extrajo DNA de 236 individuos de Circulifer tenellus, 144 plantas de chile y 347 plantas arvenses; todas plantas sintomáticas. Posteriormente se analizaron mediante PCR anidada de la región 16S rRNA. Las especies vegetales que se presentaron con mayor frecuencia fueron Eruca sativa (35%), Reseda luteola (20%) y Sisymbrium irio (18%) en Zacatecas, y Chenopodium album (30%), Capsella bursa-pastoris (23%) y R. luteola (23%) en Aguascalientes, siendo E. sativa y Ch. album las de mayor prevalencia del patógeno, con un rango de 51 a 131 muestras positivas en dichas especies. Fueron identificados 11 géneros de cicadélidos presentes en los sitos de estudio, entre los que destacan Aceratagallia, Agallia, Circulifer, Dalbulus, Empoasca y Graminella. Tanto en el cultivo, como en el insecto vector C. tenellus y plantas hospederas alternas fue identificado el fitoplasma Candidatus Phytoplasma Trifolii (16 SrVI). | |
dc.description.tableofcontents | ÍNDICE DE FIGURAS ........................................................................................................... i ÍNDICE DE CUADROS ....................................................................................................... iii RESUMEN ............................................................................................................................ iv ABSTRACT ........................................................................................................................... v 1. INTRODUCCIÓN .............................................................................................................. 1 2. ANTECEDENTES ............................................................................................................. 3 2.1 Importancia del cultivo de Capsicum annuum en México ........................................... 3 2.2 Fitoplasmas ................................................................................................................... 5 2.2.1 Características generales ........................................................................................ 5 2.2.2 Clasificación de los fitoplasmas ............................................................................. 5 2.2.3 Distribución geográfica de los grupos de fitoplasmas ......................................... 11 2.2.4 Sintomatología asociada a fitoplasmas ................................................................ 13 2.2.5 Técnicas moleculares para la detección e identificación de fitoplasmas ............. 14 2.3 Transmisión de fitoplasmas ........................................................................................ 16 3. HIPÓTESIS ...................................................................................................................... 19 4. OBJETIVOS. .................................................................................................................... 19 5. MATERIAL Y MÉTODOS ............................................................................................. 20 5.1 Localidad .................................................................................................................... 20 5.2 Colecta de hospederas vegetales alternas ................................................................... 21 5.3 Colecta de insectos vectores ....................................................................................... 21 5.4 Detección e identificación de fitoplasmas .................................................................. 22 5.4.1 Extracción de DNA .............................................................................................. 22 5.4.2 PCR ...................................................................................................................... 22 5.4.3 Clonación ............................................................................................................. 23 5.4.4. Análisis de secuencia .......................................................................................... 23 5.5 Análisis estadístico ..................................................................................................... 23 6. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ...................................................................................... 25 6.1 Frecuencia de plantas hospederas alternas y detección de fitoplasmas ...................... 25 6.2 Diversidad de cicadélidos y fluctuación poblacional de los géneros portadores de fitoplasmas ........................................................................................................................ 31 6.3 Detección de fitoplasmas en el vector C. tenellus ...................................................... 36 6.4 Detección de fitoplasmas en cultivo de chile tipo mirasol ......................................... 38 6.4 Identificación del grupo taxonómico de los fitoplasmas. ........................................... 41 6.5 Influencia de las variables agroclimáticas sobre poblaciones de hospederos de fitoplasmas. ....................................................................................................................... 43 8. CONCLUSIONES ............................................................................................................ 51 9. LITERATURA CITADA ................................................................................................. 52 | |
dc.format | application/PDF | |
dc.language.iso | es | |
dc.publisher | CUCBA | |
dc.publisher | Universidad de Guadalajara | |
dc.subject | Fitoplasmas, PCR, Capsicum annuum, hospederas alternas, cicadélidos, Circulifer tenellus. | |
dc.title | Caracterización morfológica y molecular de Pestalotiopsis spp. asociado a cáncer de tallo de arándano (Vaccinium corymbosum L.) en el Occidente de México | |
dc.type | Maestría | |
dc.type | Tesis | |
dc.rights.holder | Universidad de Guadalajara | |
dc.rights.holder | Hernández Ayala Erica Gabriela |