Resumen:
Las catalasa-peroxidasas (CP´s) son enzimas bifuncionales que han sido
consideradas de interés por dos razones, la primera es que son las únicas
peroxidasas con alta actividad de catalasa y la segunda por su participación en la
activación del fármaco anti-tuberculosis llamado isoniazida.
El plegamiento y la arquitectura del sitio activo de las CP’s son típicos de
una peroxidasa. Sin embargo, mientras las peroxidasas se presentan como
monómeros, las CP´s son homodímeros u homotetrámeros. Cada subunidad está
formada por un dominio N-terminal y otro C-terminal.
El sitio activo de las CP’s es un protohemo IX localizado en el dominio Nterminal,
que presenta una triada altamente conservada His/Trp/Asp, donde el Trp
forma un aducto covalente con los residuos Tyr/Met encargados de la actividad
catalítica de la enzima. Además, las CP’s presentan tres asas largas denominadas
LL1, LL2 y LL3, de las cuales LL1 y LL2 se encargan de restringir el paso del
sustrato al centro activo.
Hasta la fecha son pocos los estudios bioquímicos reportados para CP´s y
sólo están depositadas seis estructuras cristalográficas en el PDB (Protein Data
Bank), cuatro son de bacterias, una de arquea y una de eucariontes. Por lo
anterior, en este trabajo se planteó como objetivo principal cristalizar la CP de
Neurospora crassa denominada CAT-2.
Previamente se clonó el gen de la CAT-2 en el vector pTYB1 y se expresó
en Escherichia coli. Posteriormente la enzima fue purificada por cromatografía con
una columna de afinidad. También se utilizó una columna de intercambio aniónico
o una columna de exclusión molecular. Se determinó el punto isoeléctrico de la
enzima utilizando un equipo Phastsystem obteniendo un valor de pI experimental
de 5, que es similar al teórico. Los análisis de dispersión dinámica de luz (DLS) mostraron la capacidad
termoestable de la CAT-2 en altas temperaturas (40°C), además de revelar la
pureza de la muestra ya que durante estos ensayos la enzima se mantuvo
homogénea y monodispersa en solución, aún con la implementación de tres
amortiguadores diferentes.
Se realizaron pruebas de cristalización de la CAT-2 con el método de
“batch” y también pruebas de gota colgante y gota sentada utilizando el robot de
cristalización “Mosquito LCP”. Una vez que se encontraron las condiciones de
cristalización se realizaron matrices de optimización y escalado, en las que se
varió la concentración de las soluciones madre con el fin de conseguir mejores
cristales. De los cristales que se obtuvieron, nueve fueron congelados y
difractados en líneas de los sincrotrones de Brookhaven y Stanford. Así, se
comprobó que eran cristales de la enzima. Aunque desafortunadamente ninguno
presentó la calidad suficiente para realizar una colecta de datos y determinar la
estructura cristalográfica de la CAT-2.
Con el fin de conocer más sobre la CAT-2 se realizaron dos análisis de su
secuencia utilizando los programas XtalPred y ProtParam. Los resultados de
XtalPred indicaron que la CAT-2 es una enzima difícil de cristalizar, ya que
presenta regiones desordenadas en su secuencia. Con ProtParam se
determinaron algunos parámetros teóricos de la CAT-2, como la masa molecular y
el pI. También, su secuencia fue alineada con las secuencias de las otras CP´s
que tienen determinada su estructura cristalográfica utilizando el programa BioEdit
para identificar los residuos de aminoácidos importantes en la CAT-2. Asimismo a
estas secuencias se les realizó un análisis de BLAST para determinar el
porcentaje de identidad entre la CAT-2 y otras CP’s. Finalmente, se generó un
modelo tridimensional con la secuencia de la CAT-2, con el fin de analizar algunas
características de la enzima. El modelo se construyó considerando la identidad de
la CAT-2 y las otras CP´s cuya estructura se conoce, especialmente con la CP de
Magnaporthe grisea con la que tiene un 62% de identidad de secuencia. El modelo
se realizó utilizando el programa SWISS MODEL de ExPASy. En el modelo de la CAT-2 observamos que es muy parecido a la estructura cristalográfica de M.
grisea.